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流式细胞术—样本制备

人阅读 发布时间:2020-08-26 02:21

 
血液标本
用肝素抗凝管采集静脉血 (必须用肝素钠抗凝, 不可用肝素锂、EDTA 或枸橼酸钠) 12 ml,血液室温放置,8 小时内必须进行检测,否则需弃用。
 
外周血单个核细胞(PBMC)标本
肝素抗凝管采集静脉血至少 2 ml,采集后 4 小时内使用;
加入等体积的 HBSSHank平衡盐缓冲液,pH7.27.4)稀释血液;
取与稀释后血液等体积的淋巴细胞分层液(Ficoll液)加入离心管中;
将稀释血液小心地加到淋巴细胞分层液上,注意保持两者界面清晰;
室温下,2000 r/min,离心20分钟;
用毛细吸管轻轻吸出单个核细胞层,加入含有5 ml HBSS 的试管中,充分混匀;
1500 rpm,离心5分钟,弃上清后,再洗一次;
弃上清,用RPMI 1640(含10%热灭活FBS)重悬单个核细胞,用台酚兰染色计数活细胞数(应在95%以上);
调节细胞浓度为 2×106细胞/ml
 
分离关节滑液中的单个核细胞
将关节滑液置含肝素(终浓度5 IU/ml)的离心管中,离心1000×g 15分钟。
用含2%灭活小牛血清的Hanks液悬浮沉淀细胞,离心1000×g 15分钟,去上清。用含2%灭活小牛血清的Hanks液悬浮细胞至原容量。
用淋巴细胞分离液分离关节滑液中的单个核细胞,并用含10%小牛血清的细胞培养液将细胞配成适当浓度。
 
分离组织中的单个核细胞
取外科分离的各种组织,用含1%庆大霉素和1%小牛血清的MEM培养液洗涤组织块,洗去可能的污染物。将组织块置培养皿中,加入约为组织块体积5~10倍的同样MEM培养液。用无菌外科剪刀将组织块剪碎成0.5 mm3大小。
将组织块转移到小培养瓶中,静置片刻,吸去培养液。加入约2倍组织块体积的、滤过除菌的酶溶液。37℃水浴摇床中消化12小时,注意组织块的消化程度。
当组织块消化分散后,用手用力摇晃培养瓶35分钟或用大口吸管反复吹打,使细胞团进一步分散。加入30 ml上述MEM培养液,终止酶反应。
让上述悬液通过200目的金属网或尼龙网,分离单个细胞。用上述MEM培养液洗涤细胞3次,每次离心1000×g 10分钟。用1%台盼蓝染色法检测细胞活力并计数细胞。
如果细胞量较多(>107),应当用上述淋巴细胞分离液分离出单个核细胞,并用含10%小牛血清的细胞培养液将细胞配成适当浓度。
 
从小鼠胸腺中分离胸腺细胞
脱臼或剪头处死小鼠,置75%乙醇中浸泡消毒。腹面向上固定,剪开小鼠胸腔,暴露和摘取胸腺。在平皿中用Hanks液洗净血液,去除结缔组织。
在有少量细胞培养液的平皿中,用镊子梳理胸腺,再用大口吸管反复吹打,分离单个细胞。离心沉淀细胞,用细胞培养液洗涤细胞1次。加入适量细胞培养液,静置5分钟,让大的组织块自然沉降,吸出单个胸腺细胞。
1%台盼蓝染色法检测细胞活力,计数细胞。再用含10%小牛血清的细胞培养液将细胞配成适当浓度。

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